Методика количественного определения суммы флавоноидов в траве солодки голой

Трава солодки голой (Glycyrrhiza glabra L.) является перспективным растительным сырьём, которое может быть комплексно использовано для разработки лекарственных препаратов с противовоспалительным действием.

Цель. Разработка методики количественного определения суммы флавоноидов в траве солодки голой.

Материал и методы. Объектами исследования являлись 5 образцов травы солодки голой, заготовленных в летний период времени в различных местах произрастания и культивирования. В качестве стандартного образца использовали пиностробин. Регистрацию УФ-спектров проводили с помощью спектрофотометра «Specord 40» (Analytik Jena AG, Германия) методом дифференциальной спектрофотометрии. В качестве растворителя использовали спирт этиловый 96%.

Результаты. Количественное определение суммы флавоноидов в траве солодки голой проводили при аналитической длине волны 310 нм в пересчёте на пиноцембрин. Установлены оптимальные параметры экстрагирования суммы флавоноидов из травы солодки голой: экстрагент – спирт этиловый 90%; соотношение «сырье-экстрагент» – 1:50; время экстракции – 60 мин; степень измельчения сырья – 2 мм. Определено содержание суммы флавоноидов для травы солодки голой, которое варьирует от 0,39±0,002 до 3,41±0,015% с учётом влажности растительного сырья от 9,97±0,003 до 10,03±0,003% в зависимости от места произрастания, культивирования и года сбора растительного сырья. Погрешность единичного определения с доверительной вероятностью 95% составляла ±0,73.

Заключение. Разработанная методика количественного определения флавоноидов в траве солодки голой может быть использована для решения вопросов стандартизации указанного лекарственного растительного сырья.

1. Егоров М.В., Куркин В.А., Запесочная Г.Г., Быков В.А. Качественный и количественный анализ сырья и препаратов солодки // Вестник ВГУ. Серия: Химия. Биология. Фармация. – 2005. – № 1. – С. 175–180.

2. Куркин В.А., Егоров М.В. Стандартизация корней солодки голой и лекарственного препарата «Солодки экстракт жидкий» // Фундаментальные исследования. – 2014. – Т. 6, № 6. – С. 1232–-1236.

3. Абдрахманова Г.М., Жаугашева С.К., Павелковская Г.П. Разработка технологии двуслойных суппозиториев на основе экстракта солодки и парацетамола // Фармация и фармакология. – 2014. – Т. 7, № 6. – С. 36–38. DOI: 10.19163/2307-9266-2014-2-6(7)-36-38

4. Таланова И.О., Волкова Т.Г. Сравнительный анализ некоторых отхаркивающих препаратов на основе солодки // Международный научно-исследовательский журнал. – 2023. – Т. 129, № 3. – С. 1–5. DOI: 10.23670/IRJ.2023.129.29

5. Бровченко Б.В., Ермакова В.А., Боков Д.О., Самылина И.А., Демина Н.Б., Чернова С.В. Валидация ВЭЖХ методики определения содержания глицирризиновой кислоты в корнях солодки // Химико-фармацевтический журнал. – 2019. – Т. 53, № 12. – С. 42–47. DOI: 10.33380/2305-2066-2019-8-2-87-91.

6. Бровченко Б.В., Ермакова В.А., Боков Д.О., Самылина И.А., Лазарева Н.Б. Оценка содержания глицирризиновой кислоты в корнях солодки и продуктах их переработки методом ВЭЖХ-УФ // Разработка и регистрация лекарственных средств. – 2019. – Т. 8, № 2. – С. 87–91. DOI: 10.33380/2305-2066-2019-8-2-87-91

7. Ермакова В.А., Самылина И.А., Ковалева Т.Ю., Бровченко Б.В., Доровских Е.А., Бобкова Н.В. Корни солодки: анализ фармакопейных требований // Фармация. – 2019. – Т. 68, № 6. – С. 16–19.

8. Юлдашев М.П., Ботиров Э.Х., Вдовин А.Д., Абдуллаев А.Д. Глабризофлафон – новый изофлавон из Glyccrrhiza glabra L. // Биоорганическая химия. – 2000. – Т. 26, № 11. – С. 873–876.

9. Ботиров Э.Х., Киямитдинова Ф., Маликов В.М. Флавоноиды надземной части Glyccrhiza glabra // Химия природных соединений. – 1986. – № 1. – С. 111–112.

10. Gao M., Liu R., Zhu S.Y., Du G.H. Acute neurovascular unit protective action of pinocembrin against permanent cerebral ischemia in rats // J Asian Nat Prod Res. – 2008. – Vol. 10, No. 5–6. – P. 551–558. DOI: 10.1080/10286020801966955

11. Liu R., Gao M., Yang Z.H., Du G.H. Pinocembrin protects rat brain against oxidation and apoptosis induced by ischemia–reperfusion both in vivo and in vitro // Brain Res. – 2008. – Vol. 1216. – P. 104–115. DOI: 10.1016/j.brainres.2008.03.049

12. Rasul A., Millimouno F.M., Ali Eltayb W., Ali M., Li J., Li X. Pinocembrin: a novel natural compound with versatile pharmacological and biological activities // BioMed Res Int. – 2013. – Vol. 2013. – Art. ID: 379850. DOI: 10.1155/2013/379850

13. Shi L.L., Qiang G.F., Gao M., Zhang H.A., Chen B.N., Yu X.Y., Xuan Z.H., Wang Q.Y, Du G.H. Effect of pinocembrin on brain mitochondrial respiratory function // Acta Pharm Sin. – 2011. – Vol. 46, No. 6. – P. 642–649. Chinese

14. Wu C.X., Liu R., Gao M., Zhao G., Wu S., Wu C.F., Du G.H. Pinocembrin protects brain against ischemia/reperfusion injury by attenuating endoplasmic reticulum stress induced apoptosis // Neurosci Lett. – 2013. – No. 546. – P. 57–62. DOI: 10.1016/j.neulet.2013.04.060

15. Li X., Zhai Y., Xi B., Ma W., Zhang J., Ma X., Miao Y., Zhao Y., Ning W., Zhou H., Yang C. Pinocembrin Ameliorates Skin Fibrosis via Inhibiting TGF-β1 Signaling Pathway // Biomolecules. – 2021. – Vol. 11, No. 8. – P. 1240. DOI: 10.3390/biom11081240

16. Said M.M., Azab S.S., Saeed N.M. Antifibrotic Mechanism of Pinocembrin: Impact on Oxidative Stress, Inflammation and TGF-β /Smad Inhibition in Rats // Ann Hepatol. – 2018. – Vol. 1 (17), No. 2. – P. 307–317. DOI: 10.5604/01.3001.0010.8661

17. Promsan S., Jaikumkao K., Pongchaidecha A., Chattipakorn N., Chatsudthipong V., Arjinajarn P., Pompimon W., Lungkaphin A. Pinocembrin attenuates gentamicin-induced nephrotoxicity in rats // Can J Physiol Pharmacol. – 2016. – Vol. 94, No. 8. – P. 808–818. DOI: 10.1139/cjpp-2015-0468

18. Dunstan M.S., Robinson C.J., Jervis A.J., Yan C., Carbonell P., Hollywood K.A., Currin A., Swainston N., Le Feuvre R., Micklefield J., Faulon J.L., Breitling R., Turner N., Takano E., Scrutton N.S. Engineering Escherichia coli towards de novo production of gatekeeper (2S)-flavanones: naringenin, pinocembrin, eriodictyol and homoeriodictyol // Synth Biol (Oxf). – 2020. – Vol. 5, No. 1. – Art. ID: ysaa012. DOI: 10.1093/synbio/ysaa012

19. Cao W., Ma W., Wang X. Enhanced pinocembrin production in Escherichia coli by regulating cinnamic acid metabolism // Sci Rep. – 2016. – Vol. 6. – Art. ID: 32640. DOI: 10.1038/srep32640

20. García Forero A., Villamizar Mantilla D.A., Núñez L.A., Ocazionez R.E., Stashenko E.E., Fuentes J.L. Photoprotective and Antigenotoxic Effects of the Flavonoids Apigenin, Naringenin and Pinocembrin // Photochem Photobiol. – 2019. – Vol. 95, No. 4. – P. 1010–1018. DOI:10.1111/php.13085

21. Fuentes J.L., Villamizar Mantilla D.A., Flores González S.J., Núñez L.A., Stashenko E.E. Plants growing in Colombia as sources of active ingredients for sunscreens // Int J Radiat Biol. – 2021. – Vol. 97, No. 12. – P. 1705–1715. DOI: 10.1080/09553002.2021.1987564

22. Gu X., Zhang Q., Du Q., Shen H., Zhu Z. Pinocembrin attenuates allergic airway inflammation via inhibition of NF-κB pathway in mice // Int Immunopharmacol. – 2017. – Vol. 53. – P. 90–95. DOI: 10.1016/j.intimp.2017.10.005

23. Абдурахманов Б.А., Сотимов Г.Б., Халилов Р.М., Маматханов А.У. Технология получения субстанции на основе флавоноидов надземной части Glycyrrhiza glabra // Химико-фармацевтический журнал. – 2021. – Т. 55, № 10. – С. 18–22. DOI: 10.30906/0023-1134-2021-55-10-18-22

24. Хасанова Р.Х., А.Н. Набиев, Вахабов А.А. Пиноцембрин препарат из солодки голой // Научно-практический журнал. «Гастроэнтерология Санкт-Петербурга». – 2003. – № 2–3. – С. 180.

25. Маматханова М.А., Абдурахманов Б.А., Нигматуллаев Б.А., Сотимов Г.Б., Халилов Р.М., Маматханов А.У. Изучение надземной части Glycyrrhiza glabra в качестве перспективного сырья для производства препаратов на основе флавоноидов // Химия растительного сырья. – 2016. – № 1. – С. 171–176.