Физиология и фармакология рецептора глюкагоноподобного пептида-1
https://doi.org/10.19163/2307-9266-2023-11-4-347-380
Аннотация
Современные подходы к лечению сахарного диабета 2 типа (СД2) направлены не только на контроль гликемии, но и на снижение кардиоваскулярных рисков. Рост распространенности заболевания и необходимость в эффективных вариантах лечения подчеркивают важность агонистов рецепторов глюкагоноподобного пептида-1 (ГПП-1) в структуре фармакотерапии.
Цель. Анализ литературы, касающейся физиологии ГПП-1, а также терапевтического потенциала и тенденций развития его агонистов.
Материалы и методы. Поиск материала для написания обзора проводили с использованием реферативных баз PubMed, Google Scholar и e-Library. Поиск осуществляли по публикациям в период с 2000 по 2023 годы, с использованием следующих ключевых слов: «ГПП-1»; «агонисты ГПП-1Р»; «ГИП»; «эксенатид»; «лираглутид»; «дулаглутид»; «семаглутид»; «ликсисенатид»; «албиглутид»; «таспоглутид» с учетом различных вариантов их написания.
Результаты. Взаимодействие практически всех компонентов пищи с энтероэндокринными клетками кишечника приводит к секреции в кровь инкретинов (прежде всего ГПП-1), запускающих комплекс физиологических реакций, направленных, в первую очередь, на быструю утилизацию поступающей глюкозы (регуляция секреции инсулина и глюкагона), а также центральную регуляцию пищевого поведения (замедление опорожнения желудка и формирование чувства насыщения). Широкое распространение рецептора к ГПП-1 в различных тканях и органах, его связь с внутриклеточными сигнальными каскадами, направленными на запуск энергозатратных процессов ремоделирования (восстановления) в клетках эндотелия, сердца, нейронах, бета-клетках и др., является основой для широкого спектра плейотропных эффектов ГПП-1, не связанных с его гипогликемическим действием. Открытие синтетических агонистов рецепторов ГПП-1 с длительным периодом действия дало возможность не только терапевтически воздействовать на различные звенья нарушений углеводного обмена, но и увеличить функциональные резервы органов-мишеней СД, снижая риск развития осложнений заболевания. Инкретиноподобные препараты хорошо переносятся, самым распространенным побочным эффектом является тошнота. Факторы, ограничивающие более широкое использование препаратов, включают высокую стоимость и преимущественную форму – раствор для подкожного введения. Текущие исследования связаны с разработкой препаратов с пролонгированным действием, пероральной формы, двойных и тройных агонистов, фиксированных комбинаций, а также препаратов малых молекул.
Заключение. Агонисты рецепторов ГПП-1 представляют собой класс эффективных и безопасных лекарственных средств для терапии СД и ожирения, который стремительно развивается по самым передовым направлениям фармации. Дальнейшее развитие этой группы и решение обозначенных задач откроет новые возможности для лечения СД и его осложнений.
Об авторах
Д. В. КуркинРоссия
доктор фармацевтических наук, доцент, директор Научно-образовательного института фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; профессор кафедры клинической фармакологии и интенсивной терапии, ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1.
400131, Россия, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, д. 1.
Д. А. Бакулин
Россия
кандидат медицинских наук, руководитель Межкафедрального научно-образовательного центра фармации, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
Е. И. Морковин
Россия
кандидат медицинских наук, доцент, заведующий лабораторией нейропсихофармакологии НЦИЛС, ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России.
400131, Россия, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, д. 1
В. И. Петров
Россия
доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, заведующий кафедрой клинической фармакологии и интенсивной терапии, ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России; главный внештатный специалист – клинический фармаколог Министерства здравоохранения РФ; заслуженный деятель науки РФ; заслуженный врач РФ.
400131, Россия, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, д. 1
А. В. Стрыгин
Россия
кандидат медицинских наук, доцент, заместитель директора НЦИЛС, ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России.
400131, Россия, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, д. 1
К. Н. Корянова
Россия
кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры фармакологии с курсом клинической фармакологии ПМФИ – филиала ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России.
357532, Россия, г. Пятигорск, пр-кт Калинина, д. 11
Ю. В. Горбунова
Россия
кандидат фармацевтических наук, заведующая лабораторией, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
Ю. А. Колосов
Россия
кандидат медицинских наук, доцент, заместитель директора по учебной работе, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
О. В. Иванова
Россия
кандидат фармацевтических наук, старший научный сотрудник, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
Е. В. Павлова
Россия
младший научный сотрудник, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
М. А. Джавахян
Россия
доктор фармацевтических наук, доцент, заместитель директора по внедрению и разработке, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
А. В. Заборовский
Россия
доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой фармакологии, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
В. Б. Сапарова
Россия
научный сотрудник, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1
И. Е. Макаренко
Россия
кандидат медицинских наук, научный сотрудник, Научно-образовательный институт фармации им. К.М. Лакина, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России; руководитель медицинского департамента, ЗАО «Фарм-Холдинг».
127473, Россия, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1.
198515, Россия, г. Санкт-Петербург, пос. Стрельна, ул. Связи, д. 34А
Р. И. Драй
Россия
кандидат медицинских наук, директор ЗАО «Фарм-Холдинг».
198515, Россия, г. Санкт-Петербург, пос. Стрельна, ул. Связи, д. 34А
А. Н. Чумаченко
Россия
студент-исследователь, ФГБОУ ВО ВолгГМУ Минздрава России.
400131, Россия, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, д. 1
Список литературы
1. Дедов И.И., Шестакова М.В., Майоров А.Ю., Мокрышева Н.Г., Викулова О.К., Галстян Г.Р., Кураева Т.Л., Петеркова В.А., Смирнова О.М., Старостина Е.Г., Суркова Е.В., Сухарева О.Ю., Токмакова А.Ю., Шамхалова М.Ш., Ярек-Мартынова И.Я., Артемова Е.В., Бешлиева Д.Д., Бондаренко О.Н., Волеводз Н.Н., Гомова И.С., Григорян О.Р., Джемилова З.Н., Есаян Р.М., Ибрагимова Л.И., Калашников В.Ю., Кононенко И.В., Лаптев Д.Н., Липатов Д.В., Мельникова О.Г., Михина М.С., Мичурова М.С., Мотовилин О.Г., Никонова Т.В., Роживанов Р.В., Скляник И.А., Шестакова Е.А. «Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом». Под редакцией И.И. Дедова, М.В. Шестаковой, А.Ю. Майорова. 10-й выпуск // Сахарный диабет. – 2021. – Т. 24, № 1S. – С. 1–148. DOI: 10.14341/DM12802
2. Blonde L., Umpierrez G.E., Reddy S.S., McGill J.B., Berga S.L., Bush M., Chandrasekaran S., DeFronzo R.A., Einhorn D., Galindo R.J., Gardner T.W., Garg R., Garvey W.T., Hirsch I.B., Hurley D.L., Izuora K., Kosiborod M., Olson D., Patel S.B., Pop-Busui R., Sadhu A.R., Samson S.L., Stec C., Tamborlane W.V. Jr, Tuttle K.R., Twining C., Vella A., Vellanki P., Weber S.L. American Association of Clinical Endocrinology Clinical Practice Guideline: Developing a Diabetes Mellitus Comprehensive Care Plan-2022 Update // Endocr Pract. – 2022. – Vol. 28, No. 10. – P. 923–1049. DOI: 10.1016/j.eprac.2022.08.002
3. Saisho Y. Incretin-based therapy and pancreatitis: accumulating evidence and unresolved questions // Ann Transl Med. – 2018. – Vol. 6, No. 7. – P. 131. DOI: 10.21037/atm.2018.02.24
4. Müller T.D., Finan B., Bloom S.R., D’Alessio D., Drucker D.J., Flatt P.R., Fritsche A., Gribble F., Grill H.J., Habener J.F., Holst J.J., Langhans W., Meier J.J., Nauck M.A., Perez-Tilve D., Pocai A., Reimann F., Sandoval D.A., Schwartz T.W., Seeley R.J., Stemmer K., Tang-Christensen M., Woods S.C., DiMarchi R.D., Tschöp M.H. Glucagon-like peptide 1 (GLP-1) // Mol Metab. – 2019. – Vol. 30. – P. 72–130. DOI: 10.1016/j.molmet.2019.09.010
5. Holst J.J. From the Incretin Concept and the Discovery of GLP-1 to Today’s Diabetes Therapy // Front Endocrinol (Lausanne). – 2019. – Vol. 10. – P. 260. DOI: 10.3389/fendo.2019.00260
6. Sharma D., Verma S., Vaidya S., Kalia K., Tiwari V. Recent updates on GLP-1 agonists: Current advancements & challenges // Biomed. Pharmacother. – 2018. – Vol. 108. – P. 952–962. DOI: 10.1016/j.biopha.2018.08.088
7. Brierley D.I., de Lartigue G. Reappraising the role of the vagus nerve in GLP-1-mediated regulation of eating // Br J Pharmacol. – 2022. – Vol. 179, No. 4. – P. 584–599. DOI: 10.1111/bph.15603
8. Singh I., Wang L., Xia B., Liu J., Tahiri A., El Ouaamari A., Wheeler M.B., Pang Z.P. Activation of arcuate nucleus glucagon-like peptide-1 receptor-expressing neurons suppresses food intake // Cell Biosci. – 2022. – Vol. 12, No. 1. – P. 178. DOI: 10.1186/s13578-022-00914-3
9. Gabe M.B.N., Skov-Jeppesen K., Gasbjerg L.S., Schiellerup S.P., Martinussen C., Gadgaard S., Boer G.A., Oeke J., Torz L.J., Veedfald S., Svane M.S., Bojsen-Møller K.N., Madsbad S., Holst J.J., Hartmann B., Rosenkilde M.M. GIP and GLP-2 together improve bone turnover in humans supporting GIPR-GLP-2R co-agonists as future osteoporosis treatment // Pharmacol Res. – 2022. – Vol. 176. – P. 106058. DOI: 10.1016/j.phrs.2022.106058
10. Henriksen D.B., Alexandersen P., Hartmann B., Adrian C.L., Byrjalsen I., Bone H.G., Holst J.J., Christiansen C. Four-month treatment with GLP-2 significantly increases hip BMD: a randomized, placebo-controlled, dose-ranging study in postmenopausal women with low BMD // Bone. – 2009. – Vol. 45, No. 5. – P. 833–842. DOI: 10.1016/j.bone.2009.07.008
11. Greco E.V., Russo G., Giandalia A., Viazzi F., Pontremoli R., De Cosmo S. GLP-1 Receptor Agonists and Kidney Protection // Medicina (Kaunas). – 2019. – Vol. 55, No. 6. – P. 233. DOI: 10.3390/medicina55060233
12. Zhao X., Wang M., Wen Z., Lu Z., Cui L., Fu C., Xue H., Liu Y., Zhang Y. GLP-1 Receptor Agonists: Beyond Their Pancreatic Effects // Front. Endocrinol. (Lausanne). – 2021. – Vol. 12. – P. 721135. DOI: 10.3389/fendo.2021.721135
13. Whalley N.M., Pritchard L.E., Smith D.M., White A. Processing of proglucagon to GLP-1 in pancreatic α-cells: is this a paracrine mechanism enabling GLP-1 to act on β-cells? // J Endocrinol. – 2011. – Vol. 211, No. 1. – P. 99–106. DOI: 10.1530/JOE-11-0094
14. Wideman R.D., Yu I.L., Webber T.D., Verchere C.B., Johnson J.D., Cheung A.T., Kieffer T.J. Improving function and survival of pancreatic islets by endogenous production of glucagon-like peptide 1 (GLP-1) // Proc Natl Acad Sci USA. – 2006. – Vol. 103, No. 36. – P. 13468–13473. DOI: 10.1073/pnas.0600655103
15. Jun L.S., Millican R.L., Hawkins E.D., Konkol D.L., Showalter A.D., Christe M.E., Michael M.D., Sloop K.W. Absence of glucagon and insulin action reveals a role for the GLP-1 receptor in endogenous glucose production // Diabetes. – 2015. – Vol. 64, No. 3. – P. 819–827. DOI: 10.2337/db14-1052
16. Capozzi M.E., Svendsen B., Encisco S.E., Lewandowski S.L., Martin M.D., Lin H., Jaffe J.L., Coch R.W., Haldeman J.M., MacDonald P.E., Merrins M.J., D’Alessio D.A., Campbell J.E. β Cell tone is defined by proglucagon peptides through cAMP signaling // JCI Insight. – 2019. – Vol. 4, No. 5. – P. e126742. DOI: 10.1172/jci.insight.126742
17. Zhao F., Zhou Q., Cong Z., Hang K., Zou X., Zhang C., Chen Y., Dai A., Liang A., Ming Q., Wang M., Chen L.N., Xu P., Chang R., Feng W., Xia T., Zhang Y., Wu B., Yang D., Zhao L., Xu H.E., Wang M.W. Structural insights into multiplexed pharmacological actions of tirzepatide and peptide 20 at the GIP, GLP-1 or glucagon receptors // Nat Commun. – 2022. – Vol. 13, No. 1. – P. 1057. DOI: 10.1038/s41467-022-28683-0
18. Svendsen B., Larsen O., Gabe M.B.N., Christiansen C.B., Rosenkilde M.M., Drucker D.J., Holst J.J. Insulin Secretion Depends on Intra-islet Glucagon Signaling // Cell Rep. – 2018. – Vol. 25, No. 5. – P. 1127–1134.e2. DOI: 10.1016/j.celrep.2018.10.018
19. Holst J.J. Glucagon-like peptide-1: Are its roles as endogenous hormone and therapeutic wizard congruent? // J Intern Med. – 2022. – Vol. 291, No. 5. – P. 557–573. DOI: 10.1111/joim.13433
20. Malik F., Li Z. Non-peptide agonists and positive allosteric modulators of glucagon-like peptide-1 receptors: Alternative approaches for treatment of Type 2 diabetes // Br J Pharmacol. – 2022. – Vol. 179, No. 4. – P. 511–525. DOI: 10.1111/bph.15446
21. McLean B.A., Wong C.K., Campbell J.E., Hodson D.J., Trapp S., Drucker D.J. Revisiting the Complexity of GLP-1 Action from Sites of Synthesis to Receptor Activation // Endocr Rev. – 2021. – Vol. 42, No. 2. – P. 101–132. DOI: 10.1210/endrev/bnaa032
22. Choe H.J., Cho Y.M. Peptidyl and Non-Peptidyl Oral Glucagon-Like Peptide-1 Receptor Agonists // Endocrinol. Metab. (Seoul). – 2021. – Vol. 36, No. 1. – P. 22–29. DOI: 10.3803/EnM.2021.102
23. Kawai T., Sun B., Yoshino H., Feng D., Suzuki Y., Fukazawa M., Nagao S., Wainscott D.B., Showalter A.D., Droz B.A., Kobilka T.S., Coghlan M.P., Willard F.S., Kawabe Y., Kobilka B.K., Sloop K.W. Structural basis for GLP-1 receptor activation by LY3502970, an orally active nonpeptide agonist // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2020. – Vol. 117, No. 47. – P. 29959–29967. DOI: 10.1073/pnas.2014879117
24. Pyke C., Heller R.S., Kirk R.K., Ørskov C., Reedtz-Runge S., Kaastrup P., Hvelplund A., Bardram L., Calatayud D., Knudsen L.B. GLP-1 receptor localization in monkey and human tissue: novel distribution revealed with extensively validated monoclonal antibody // Endocrinology. – 2014. – Vol. 155, No. 4. – P. 1280–1290. DOI: 10.1210/en.2013-1934
25. Richards P., Parker H.E., Adriaenssens A.E., Hodgson J.M., Cork S.C., Trapp S., Gribble F.M., Reimann F. Identification and characterization of GLP-1 receptor-expressing cells using a new transgenic mouse model // Diabetes. – 2014. – Vol. 63, No. 4. – P. 1224–1233. DOI: 10.2337/db13-1440
26. Hjørne A.P., Modvig I.M., Holst J.J. The Sensory Mechanisms of Nutrient-Induced GLP-1 Secretion // Metabolites. – 2022. – Vol. 12, No. 5. – P. 420. DOI: 10.3390/metabo12050420
27. Mayendraraj A., Rosenkilde M.M., Gasbjerg L.S. GLP-1 and GIP receptor signaling in beta cells – а review of receptor interactions and co-stimulation // Peptides. – 2022. – Vol. 151. – P. 170749. DOI: 10.1016/j.peptides.2022.170749
28. Wootten D., Reynolds C.A., Smith K.J., Mobarec J.C., Koole C., Savage E.E., Pabreja K., Simms J., Sridhar R., Furness S.G.B., Liu M., Thompson P.E., Miller L.J., Christopoulos A., Sexton P.M. The Extracellular Surface of the GLP-1 Receptor Is a Molecular Trigger for Biased Agonism // Cell. – 2016. – Vol. 165, No. 7. – P. 1632–1643. DOI: 10.1016/j.cell.2016.05.023
29. Spreckley E., Murphy K.G. The L-Cell in Nutritional Sensing and the Regulation of Appetite // Front Nutr. – 2015. – Vol. 2. – P. 23. DOI: 10.3389/fnut.2015.00023
30. Wang X., Liu H., Chen J., Li Y., Qu S. Multiple Factors Related to the Secretion of Glucagon-Like Peptide-1 // Int J Endocrinol. – 2015. – Vol. 2015. – P. 651757. DOI: 10.1155/2015/651757
31. Alavi S.E., Cabot P.J., Moyle P.M. Glucagon-Like Peptide-1 Receptor Agonists and Strategies To Improve Their Efficiency // Mol Pharm. – 2019. – Vol. 16, No. 6. – P. 2278–2295. DOI: 10.1021/acs.molpharmaceut.9b00308
32. Eriksson L., Nyström T. Antidiabetic agents and endothelial dysfunction – beyond glucose control. Basic Clin Pharmacol Toxicol. – 2015. – Vol. 117, No. 1. – P. 15–25. DOI: 10.1111/bcpt.12402
33. Calanna S., Christensen M., Holst J.J., Laferrère B., Gluud L.L., Vilsbøll T., Knop F.K. Secretion of glucagon-like peptide-1 in patients with type 2 diabetes mellitus: systematic review and meta-analyses of clinical studies // Diabetologia. – 2013. – Vol. 56, No. 5. – P. 965–972. DOI: 10.1007/s00125-013-2841-0
34. Kuhre R.E., Frost C.R., Svendsen B., Holst J.J. Molecular mechanisms of glucose-stimulated GLP-1 secretion from perfused rat small intestine // Diabetes. – 2015. – Vol. 64, No. 2. – P. 370–382. DOI: 10.2337/db14-0807
35. Tyurenkov I.N., Ozerov A.A., Kurkin D.V., Logvinova E.O., Bakulin D.A., Volotova E.V., Borodin D.D. Structure and biological activity of endogenous and synthetic agonists of GPR119 // Russian Chemical Reviews. – 2018. – Vol. 87, No. 2. – P. 151–166. DOI: 10.1070/rcr4737
36. Тюренков И.Н., Куркин Д.В., Волотова Е.В., Бакулин Д.А. Роль микрофлоры кишечника, состава пищи, GPR41- и GPR43-рецепторов к короткоцепочечным жирным кислотам в энергетическом обмене позвоночных животных // Успехи физиологических наук. – 2017. – Т. 48, № 2. – С. 100–112.
37. Tyurenkov I.N., Kurkin D.V., Bakulin D.A., Volotova E.V., Morkovin E.I., Chafeev M.A., Karapetian R.N. Chemistry and Hypoglycemic Activity of GPR119 Agonist ZB-16 // Front Endocrinol (Lausanne). – 2018. – Vol. 9. – P. 543. DOI: 10.3389/fendo.2018.00543
38. Im D.S. GPR119 and GPR55 as Receptors for Fatty Acid Ethanolamides, Oleoylethanolamide and Palmitoylethanolamide // Int J Mol Sci. – 2021. – Vol. 22, No. 3. – P. 1034. DOI: 10.3390/ijms22031034
39. Higuchi N., Hira T., Yamada N., Hara H. Oral administration of corn zein hydrolysate stimulates GLP-1 and GIP secretion and improves glucose tolerance in male normal rats and Goto-Kakizaki rats // Endocrinology. – 2013. – Vol. 154, No. 9. – P. 3089–3098. DOI: 10.1210/en.2012-2275
40. Gagnon J., Baggio L.L., Drucker D.J., Brubaker P.L. Ghrelin Is a Novel Regulator of GLP-1 Secretion // Diabetes. – 2015. – Vol. 64, No. 5. – P. 1513–1521. DOI: 10.2337/db14-1176
41. Hansen L., Lampert S., Mineo H., Holst J.J. Neural regulation of glucagon-like peptide-1 secretion in pigs // Am J Physiol Endocrinol Metab. – 2004. – Vol. 287, No. 5. – P. E939–947. DOI: 10.1152/ajpendo.00197.2004
42. Persson K., Gingerich R.L., Nayak S., Wada K., Wada E., Ahrén B. Reduced GLP-1 and insulin responses and glucose intolerance after gastric glucose in GRP receptor-deleted mice // Am J Physiol Endocrinol. Metab. – 2000. – Vol. 279, No. 5. – P. E956–962. DOI: 10.1152/ajpendo.2000.279.5.E956
43. Han Y.E., Kang C.W., Oh J.H., Park S.H., Ku C.R., Cho Y.H., Lee M.K., Lee E.J. Olfactory Receptor OR51E1 Mediates GLP-1 Secretion in Human and Rodent Enteroendocrine L Cells // J Endocr Soc. – 2018. – Vol. 2, No. 11. – P. 1251–1258. DOI: 10.1210/js.2018-00165
44. Tomas A., Jones B., Leech C. New Insights into Beta-Cell GLP-1 Receptor and cAMP Signaling // J Mol Biol. – 2020. – Vol. 432, No. 5. – P. 1347–1366. DOI: 10.1016/j.jmb.2019.08.009
45. Gromada J., Brock B., Schmitz O., Rorsman P. Glucagon-like peptide-1: regulation of insulin secretion and therapeutic potential // Basic Clin Pharmacol Toxicol. – 2004. – Vol. 95, No. 6. – P. 252–262. DOI: 10.1111/j.1742-7843.2004.t01-1-pto950502.x
46. Buteau J. GLP-1 receptor signaling: effects on pancreatic beta-cell proliferation and survival // Diabetes Metab. – 2008. – Vol. 34 Suppl 2. – P. S73–77. DOI: 10.1016/S1262-3636(08)73398-6
47. Park S., Dong X., Fisher T.L., Dunn S., Omer A.K., Weir G., White M.F. Exendin-4 uses Irs2 signaling to mediate pancreatic beta cell growth and function // J Biol Chem. – 2006. – Vol. 281, No. 2. – P. 1159–1168. DOI: 10.1074/jbc.M508307200
48. Peng W., Zhou R., Sun Z.F., Long J.W., Gong Y.Q. Novel Insights into the Roles and Mechanisms of GLP-1 Receptor Agonists against Aging-Related Diseases // Aging Dis. – 2022. – Vol. 13, No. 2. – P. 468–490. DOI: 10.14336/AD.2021.0928
49. Oh Y.S., Jun H.S. Effects of Glucagon-Like Peptide-1 on Oxidative Stress and Nrf2 Signaling // Int J Mol Sci. – 2017. – Vol. 19, No. 1. – P. 26. DOI: 10.3390/ijms19010026
50. Urusova I.A., Farilla L., Hui H., D’Amico E., Perfetti R. GLP-1 inhibition of pancreatic islet cell apoptosis // Trends Endocrinol Metab. – 2004. – Vol. 15, No. 1. – P. 27–33. DOI: 10.1016/j.tem.2003.11.006
51. Drucker D.J. Mechanisms of action and therapeutic application of glucagon-like peptide-1 // Cell Metab. – 2018. – Vol. 27, No. 4. – P. 740–756. DOI: 10.1016/j.cmet.2018.03.001
52. De Marinis Y.Z., Salehi A., Ward C.E., Zhang Q., Abdulkader F., Bengtsson M., Braha O., Braun M., Ramracheya R., Amisten S., Habib A.M., Moritoh Y., Zhang E., Reimann F., Rosengren A., Shibasaki T., Gribble F., Renström E., Seino S., Eliasson L., Rorsman P. GLP-1 inhibits and adrenaline stimulates glucagon release by differential modulation of N– and L-type Ca2+ channel-dependent exocytosis // Cell Metab. – 2010. – Vol. 11, No. 6. – P. 543–553. DOI: 10.1016/j.cmet.2010.04.007
53. Ravassa S., Zudaire A., Díez J. GLP-1 and cardioprotection: from bench to bedside // Cardiovasc Res. – 2012. – Vol. 94, No. 2. – P. 316–323. DOI: 10.1093/cvr/cvs123
54. Bremholm L., Andersen U.B., Hornum M., Hilsted L., Veedfald S., Hartmann B., Holst J.J. Acute effects of glucagon-like peptide-1, GLP-19-36 amide, and exenatide on mesenteric blood flow, cardiovascular parameters, and biomarkers in healthy volunteers // Physiol Rep. – 2017. – Vol. 5, No. 4. – P. e13102. DOI: 10.14814/phy2.13102
55. Sun F., Wu S., Guo S., Yu K., Yang Z., Li L., Zhang Y., Quan X., Ji L., Zhan S. Impact of GLP-1 receptor agonists on blood pressure, heart rate and hypertension among patients with type 2 diabetes: A systematic review and network meta-analysis // Diabetes Res Clin Pract. – 2015. – Vol. 110, No. 1. – P. 26–37. DOI: 10.1016/j.diabres.2015.07.015
56. Erbil D., Eren C.Y., Demirel C., Küçüker M.U., Solaroğlu I., Eser H.Y. GLP-1’s role in neuroprotection: a systematic review // Brain Inj. – 2019. – Vol. 33, No. 6. – P. 734–819. DOI: 10.1080/02699052.2019.1587000
57. Heppner K.M., Kirigiti M., Secher A., Paulsen S.J., Buckingham R., Pyke C., Knudsen L.B., Vrang N., Grove K.L. Expression and distribution of glucagon-like peptide-1 receptor mRNA, protein and binding in the male nonhuman primate (Macaca mulatta) brain // Endocrinology. – 2015. – Vol. 156, No. 1. – P. 255–267. DOI: 10.1210/en.2014-1675
58. Kabahizi A., Wallace B., Lieu L., Chau D., Dong Y., Hwang E.S., Williams K.W. Glucagon-like peptide-1 (GLP-1) signalling in the brain: From neural circuits and metabolism to therapeutics // Br J Pharmacol. – 2022. – Vol. 179, No. 4. – P. 600–624. DOI: 10.1111/bph.15682
59. Trapp S., Brierley D.I. Brain GLP-1 and the regulation of food intake: GLP-1 action in the brain and its implications for GLP-1 receptor agonists in obesity treatment // Br J Pharmacol. – 2022. – Vol. 179, No. 4. – P. 557–570. DOI: 10.1111/bph.15638
60. Alhadeff A.L., Mergler B.D., Zimmer D.J., Turner C.A., Reiner D.J., Schmidt H.D., Grill H.J., Hayes M.R. Endogenous glucagon-like peptide-1 receptor signaling in the nucleus tractus solitarius is required for food intake control // Neuropsychopharmacology. – 2017. – Vol. 42, No. 7. – P. 1471–1479. DOI: 10.1038/npp.2016.246
61. Ong Z.Y., Liu J.J., Pang Z.P., Grill H.J. Paraventricular thalamic control of food intake and reward: role of glucagon-like peptide-1 receptor signaling // Neuropsychopharmacology. – 2017. – Vol. 42, No. 12. – P. 2387–2397. DOI: 10.1038/npp.2017.150
62. Adams J.M., Pei H., Sandoval D.A., Seeley R.J., Chang R.B., Liberles S.D., Olson D.P. Liraglutide modulates appetite and body weight through glucagon-like peptide 1 receptor-expressing glutamatergic neurons // Diabetes. – 2018. – Vol. 67, No. 8. – P. 1538–1548. DOI: 10.2337/db17-1385
63. Hayes M.R., Leichner T.M., Zhao S., Lee G.S., Chowansky A., Zimmer D., De Jonghe B.C., Kanoski S.E., Grill H.J., Bence K.K. Intracellular signals mediating the food intake-suppressive effects of hindbrain glucagon-like peptide-1 receptor activation // Cell Metab. – 2011. – Vol. 13, No. 3. – P. 320–330. DOI: 10.1016/j.cmet.2011.02.001
64. Sirohi S., Schurdak J.D., Seeley R.J., Benoit S.C., Davis J.F. Central & peripheral glucagon-like peptide-1 receptor signaling differentially regulate addictive behaviors // Physiol Behav. – 2016. – Vol. 161. – P. 140–144. DOI: 10.1016/j.physbeh.2016.04.013
65. Dossat A.M., Diaz R., Gallo L., Panagos A., Kay K., Williams D.L. Nucleus accumbens GLP-1 receptors influence meal size and palatability // Am J Physiol Endocrinol Metab. – 2013. – Vol. 304, No. 12. – P. E1314–1320. DOI: 10.1152/ajpendo.00137.2013
66. Hisadome K., Reimann F., Gribble F.M., Trapp S. CCK stimulation of GLP-1 neurons involves α1-adrenoceptor-mediated increase in glutamatergic synaptic inputs // Diabetes. – 2011. – Vol. 60, No. 11. – P. 2701–2709. DOI: 10.2337/db11-0489
67. Gaykema R.P., Newmyer B.A., Ottolini M., Raje V., Warthen D.M., Lambeth P.S., Niccum M., Yao T., Huang Y., Schulman I.G., Harris T.E., Patel M.K., Williams K.W., Scott M.M. Activation of murine pre-proglucagon-producing neurons reduces food intake and body weight // J Clin Invest. – 2017. – Vol. 127, No. 3. – P. 1031–1045. DOI: 10.1172/JCI81335
68. Holt M.K., Richards J.E., Cook D.R., Brierley D.I., Williams D.L., Reimann F., Gribble F.M., Trapp S. Preproglucagon neurons in the nucleus of the solitary tract are the main source of brain GLP-1, mediate stress-induced hypophagia, and limit unusually large intakes of food // Diabetes. – 2019. – Vol. 68, No. 1. – P. 21–33. DOI: 10.2337/db18-0729
69. Lee S.J., Sanchez-Watts G., Krieger J.P., Pignalosa A., Norell P.N., Cortella A., Pettersen K.G., Vrdoljak D., Hayes M.R., Kanoski S.E., Langhans W., Watts A.G. Loss of dorsomedial hypothalamic GLP-1 signaling reduces BAT thermogenesis and increases adiposity // Mol Metab. – 2018. – Vol. 11. – P. 33–46. DOI: 10.1016/j.molmet.2018.03.008
70. Maselli D.B., Camilleri M. Effects of GLP-1 and Its Analogs on Gastric Physiology in Diabetes Mellitus and Obesity // Adv Exp Med Biol. – 2021. – Vol. 1307. – P. 171–192. DOI: 10.1007/5584_2020_496
71. Ghosal S., Packard A.E.B., Mahbod P., McKlveen J.M., Seeley R.J., Myers B., Ulrich-Lai Y., Smith E.P., D’Alessio D.A., Herman J.P. Disruption of Glucagon-Like Peptide 1 Signaling in Sim1 Neurons Reduces Physiological and Behavioral Reactivity to Acute and Chronic Stress // J Neurosci. – 2017. – Vol. 37, No. 1. – P. 184–193. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.1104-16.2016
72. Salcedo I., Tweedie D., Li Y., Greig N.H. Neuroprotective and neurotrophic actions of glucagon-like peptide-1: an emerging opportunity to treat neurodegenerative and cerebrovascular disorders // Br J Pharmacol. – 2012. – Vol. 166, No. 5. – P. 1586–1599. DOI: 10.1111/j.1476-5381.2012.01971.x
73. Monti G., Gomes Moreira D., Richner M., Mutsaers H.A.M., Ferreira N., Jan A. GLP-1 Receptor Agonists in Neurodegeneration: Neurovascular Unit in the Spotlight // Cells. – 2022. – Vol. 11, No. 13. – P. 2023. DOI: 10.3390/cells11132023
74. Chang C.C., Lin T.C., Ho H.L., Kuo C.Y., Li H.H., Korolenko T.A., Chen W.J., Lai T.J., Ho Y.J., Lin C.L. GLP-1 Analogue Liraglutide Attenuates Mutant Huntingtin-Induced Neurotoxicity by Restoration of Neuronal Insulin Signaling // Int J Mol Sci. – 2018. – Vol. 19, No. 9. – P. 2505. DOI: 10.3390/ijms19092505
75. Qi L., Ke L., Liu X., Liao L., Ke S., Liu X., Wang Y., Lin X., Zhou Y., Wu L., Chen Z., Liu L. Subcutaneous administration of liraglutide ameliorates learning and memory impairment by modulating tau hyperphosphorylation via the glycogen synthase kinase-3β pathway in an amyloid β protein induced alzheimer disease mouse model // Eur J Pharmacol. – 2016. – Vol. 783. – P. 23–32. DOI: 10.1016/j.ejphar.2016.04.052
76. Chen S., Sun J., Zhao G., Guo A., Chen Y., Fu R., Deng Y. Liraglutide Improves Water Maze Learning and Memory Performance While Reduces Hyperphosphorylation of Tau and Neurofilaments in APP/PS1/Tau Triple Transgenic Mice // Neurochem Res. – 2017. – Vol. 42, No. 8. – P. 2326–2335. DOI: 10.1007/s11064-017-2250-8
77. Hansen H.H., Fabricius K., Barkholt P., Niehoff M.L., Morley J.E., Jelsing J., Pyke C., Knudsen L.B., Farr S.A., Vrang N. The GLP-1 Receptor Agonist Liraglutide Improves Memory Function and Increases Hippocampal CA1 Neuronal Numbers in a Senescence-Accelerated Mouse Model of Alzheimer’s Disease // J Alzheimers Dis. – 2015. – Vol. 46, No. 4. – P. 877–888. DOI: 10.3233/JAD-143090
78. Gejl M., Brock B., Egefjord L., Vang K., Rungby J., Gjedde A. Blood-Brain Glucose Transfer in Alzheimer’s disease: Effect of GLP-1 Analog Treatment // Sci Rep. – 2017. – Vol. 7, No. 1. – P. 17490. DOI: 10.1038/s41598-017-17718-y
79. Watson K.T., Wroolie T.E., Tong G., Foland-Ross L.C., Frangou S., Singh M., McIntyre R.S., Roat-Shumway S., Myoraku A., Reiss A.L., Rasgon N.L. Neural correlates of liraglutide effects in persons at risk for Alzheimer’s disease // Behav Brain Res. – 2019. – Vol. 356. – P. 271–278. DOI: 10.1016/j.bbr.2018.08.006
80. Femminella G.D., Frangou E., Love S.B., Busza G., Holmes C., Ritchie C., Lawrence R., McFarlane B., Tadros G., Ridha B.H., Bannister C., Walker Z., Archer H., Coulthard E., Underwood B.R., Prasanna A., Koranteng P., Karim S., Junaid K., McGuinness B., Nilforooshan R., Macharouthu A., Donaldson A., Thacker S., Russell G., Malik N., Mate V., Knight L., Kshemendran S., Harrison J., Hölscher C., Brooks D.J., Passmore A.P., Ballard C., Edison P. Evaluating the effects of the novel GLP-1 analogue liraglutide in Alzheimer’s disease: study protocol for a randomised controlled trial (ELAD study) // Trials. – 2019. – Vol. 20, No. 1. – P. 191. DOI: 10.1186/s13063-019-3259-x
81. Li Y., Perry T., Kindy M.S., Harvey B.K., Tweedie D., Holloway H.W., Powers K., Shen H., Egan J.M., Sambamurti K., Brossi A., Lahiri D.K., Mattson M.P., Hoffer B.J., Wang Y., Greig N.H. GLP-1 receptor stimulation preserves primary cortical and dopaminergic neurons in cellular and rodent models of stroke and Parkinsonism // Proc Natl Acad Sci USA. – 2009. – Vol. 106, No. 4. – P. 1285–1290. DOI: 10.1073/pnas.0806720106
82. Rampersaud N., Harkavyi A., Giordano G., Lever R., Whitton J., Whitton P.S. Exendin-4 reverses biochemical and behavioral deficits in a pre-motor rodent model of Parkinson’s disease with combined noradrenergic and serotonergic lesions // Neuropeptides. – 2012. – Vol. 46, No. 5. – P. 183–193. DOI: 10.1016/j.npep.2012.07.004
83. Athauda D., Maclagan K., Skene S.S., Bajwa-Joseph M., Letchford D., Chowdhury K., Hibbert S., Budnik N., Zampedri L., Dickson J., Li .Y, Aviles-Olmos I., Warner T.T., Limousin P., Lees A.J., Greig N.H., Tebbs S., Foltynie T. Exenatide once weekly versus placebo in Parkinson’s disease: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial // Lancet. – 2017. – Vol. 390, No. 10103. – P. 1664–1675. DOI: 10.1016/S0140-6736(17)31585-4
84. Basalay M.V., Davidson S.M., Yellon D.M. Neuroprotection in Rats Following Ischaemia-Reperfusion Injury by GLP-1 Analogues-Liraglutide and Semaglutide // Cardiovasc Drugs Ther. – 2019. – Vol. 33, No. 6. – P. 661–667. DOI: 10.1007/s10557-019-06915-8
85. Gerstein H.C., Colhoun H.M., Dagenais G.R., Diaz R., Lakshmanan M., Pais P., Probstfield J., Botros F.T., Riddle M.C., Rydén L., Xavier D., Atisso C.M., Dyal L., Hall S., Rao-Melacini P., Wong G., Avezum A., Basile J., Chung N., Conget I., Cushman W.C., Franek E., Hancu N., Hanefeld M., Holt S., Jansky P., Keltai M., Lanas F., Leiter L.A., Lopez-Jaramillo P., Cardona Munoz E.G., Pirags V., Pogosova N., Raubenheimer P.J., Shaw J.E., Sheu W.H., Temelkova-Kurktschiev T.; REWIND Investigators. Dulaglutide and renal outcomes in type 2 diabetes: an exploratory analysis of the REWIND randomised, placebo-controlled trial // Lancet. – 2019. – Vol. 394, No. 10193. – P. 131–138. DOI: 10.1016/S0140-6736(19)31150-X
86. Hansen M.S., Frost M. Alliances of the gut and bone axis // Semin Cell Dev Biol. – 2022. – Vol. 123. – P. 74–81. DOI: 10.1016/j.semcdb.2021.06.024
87. Mieczkowska A., Mansur S., Bouvard B., Flatt P.R., Thorens B., Irwin N., Chappard D., Mabilleau G. Double incretin receptor knock-out (DIRKO) mice present with alterations of trabecular and cortical micromorphology and bone strength // Osteoporos Int. – 2015. – Vol. 26, No. 1. – P. 209–218. DOI: 10.1007/s00198-014-2845-8
88. Maagensen H., Helsted M.M., Gasbjerg L.S., Vilsbøll T., Knop F.K. The Gut-Bone Axis in Diabetes // Curr Osteoporos Rep. – 2022. DOI: 10.1007/s11914-022-00767-2
89. Nauck M.A., Quast D.R., Wefers J., Meier J.J. GLP-1 receptor agonists in the treatment of type 2 diabetes – state-of-the-art // Mol Metab. – 2021. – Vol. 46. – P. 101102. DOI: 10.1016/j.molmet.2020.101102
90. Tomlinson B., Hu M., Zhang Y., Chan P., Liu Z.M. An overview of new GLP-1 receptor agonists for type 2 diabetes // Expert Opin Investig Drugs. – 2016. – Vol. 25, No. 2. – P. 145–158. DOI: 10.1517/13543784.2016.1123249
91. Yang X., Qiang Q., Li N., Feng P., Wei W., Hölscher C. Neuroprotective Mechanisms of Glucagon-Like Peptide-1-Based Therapies in Ischemic Stroke: An Update Based on Preclinical Research // Front Neurol. – 2022. – Vol. 13. – P. 844697. DOI: 10.3389/fneur.2022.844697
92. Cheang J.Y., Moyle P.M. Glucagon-Like Peptide-1 (GLP-1)-based therapeutics: current status and future opportunities beyond Type 2 Diabetes // ChemMedChem. – 2018. – Vol. 13, No. 7. – P. 662–671. DOI: 10.1002/cmdc.201700781
93. Kalra S., Bhattacharya S., Kapoor N. Contemporary classification of glucagon-like peptide 1 receptor Agonists (GLP1RAs) // Diabetes Ther. – 2021. – Vol. 12, No. 8. – P. 2133–2147. DOI: 10.1007/s13300-021-01113-y
94. Аметов А.С., Шохин И.Е., Рогожина Е.А., Бодрова Т.Г., Невретдинова М.Е., Белый П.А., Заславская К.Я., Куркин Д.В., Корянова К.Н., Мищенко Е.С., Носков С.М. Российская разработка для лекарственной независимости в эндокринологии: сравнительный анализ биоэквивалентности, безопасности и переносимости первого отечественного лираглутида // Фармация и фармакология. – 2023. – Т. 11, № 3. – С. 255–276. DOI: 10.19163/2307-9266-2023-11-3-255-276
95. Арефьева А.Н, Банко В.В., Садовских М.О., Носков С.М. Первый препарат семаглутида в Российской Федерации: результаты открытого рандомизированного исследования фармакокинетики // Медицинский совет. – 2023. – Т. 17, № 16. – С. 77–82. DOI: 10.21518/ms2023-312
96. Zhang X., Belousoff M.J., Zhao P., Kooistra A.J., Truong T.T., Ang S.Y., Underwood C.R., Egebjerg T., Šenel P., Stewart G.D., Liang Y.L., Glukhova A., Venugopal H., Christopoulos A., Furness S.G.B., Miller L.J., Reedtz-Runge S., Langmead C.J., Gloriam D.E., Danev R., Sexton P.M., Wootten D. Differential GLP-1R Binding and Activation by Peptide and Non-peptide Agonists // Mol Cell. – 2020. – Vol. 80, No. 3. – P. 485–500.e7. DOI: 10.1016/j.molcel.2020.09.020
97. Zhao P., Liang Y.L., Belousoff M.J., Deganutti G., Fletcher M.M., Willard F.S., Bell M.G., Christe M.E., Sloop K.W., Inoue A., Truong T.T., Clydesdale L., Furness S.G.B., Christopoulos A., Wang M.W., Miller L.J., Reynolds C.A., Danev R., Sexton P.M., Wootten D. Activation of the GLP-1 receptor by a non-peptidic agonist // Nature. – 2020. – Vol. 577, No. 7790. – P. 432–436. DOI: 10.1038/s41586-019-1902-z
98. Freeman J.L.R., Dunn I.M., Valcarce C. Beyond topline results for the oral (non-peptide) GLP-1R agonist TTP273 in type 2 diabetes: how much and when // Diabetol. Conf. 53rd Annu. Meet. Eur. Assoc. study diabetes, EASD 2017. Port. – 2017. – Vol. 60. – P. S51-S52.
99. Girdhar K., Thakur S., Gaur P., Choubey A., Dogra S., Dehury B., Kumar S., Biswas B., Dwivedi D.K., Ghosh S., Mondal P. Design, synthesis, and biological evaluation of a small molecule oral agonist of the glucagon-like-peptide-1 receptor // J Biol Chem. – 2022. – Vol. 298, No. 5. – P. 101889. DOI: 10.1016/j.jbc.2022.101889
100. Karakasis P., Patoulias D., Pamporis K., Stachteas P., Bougioukas K.I., Klisic A., Fragakis N., Rizzo M. Safety and efficacy of the new, oral, small-molecule, GLP-1 receptor agonists orforglipron and danuglipron for the treatment of type 2 diabetes and obesity: systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials // Metabolism. – 2023. – Vol. 149. – P. 155710. DOI: 10.1016/j.metabol.2023.155710
101. Bueno A.B., Sun B., Willard F.S., Feng D., Ho J.D., Wainscott D.B., Showalter A.D., Vieth M., Chen Q., Stutsman C., Chau B., Ficorilli J., Agejas F.J., Cumming G.R., Jiménez A., Rojo I., Kobilka T.S., Kobilka B.K., Sloop K.W. Structural insights into probe-dependent positive allosterism of the GLP-1 receptor // Nat Chem Biol. – 2020. – Vol. 16, No. 10. – P. 1105–1110. DOI: 10.1038/s41589-020-0589-7
102. King K., Lin N.P., Cheng Y.H., Chen G.H., Chein R.J. Isolation of Positive Modulator of Glucagon-like Peptide-1 Signaling from Trigonella foenum-graecum (Fenugreek) Seed // J Biol Chem. – 2015. – Vol. 290, No. 43. – P. 26235–26248. DOI: 10.1074/jbc.M115.672097
103. Huthmacher J.A., Meier J.J., Nauck M.A. Efficacy and Safety of Short- and Long-Acting Glucagon-Like Peptide 1 Receptor Agonists on a Background of Basal Insulin in Type 2 Diabetes: A Meta-analysis // Diabetes Care. – 2020. – Vol. 43, No. 9. – P. 2303–2312. DOI: 10.2337/dc20-0498
104. Baggio L.L., Drucker D.J. Glucagon-like peptide-1 receptor co-agonists for treating metabolic disease // Mol Metab. – 2021. – Vol. 46. – P. 101090. DOI: 10.1016/j.molmet.2020.101090
105. Finan B., Yang B., Ottaway N., Smiley D.L., Ma T., Clemmensen C., Chabenne J., Zhang L., Habegger K.M., Fischer K., Campbell J.E., Sandoval D., Seeley R.J., Bleicher K., Uhles S., Riboulet W., Funk J., Hertel C., Belli S., Sebokova E., Conde-Knape K., Konkar A., Drucker D.J., Gelfanov V., Pfluger P.T., Müller T.D., Perez-Tilve D., DiMarchi R.D., Tschöp M.H. A rationally designed monomeric peptide triagonist corrects obesity and diabetes in rodents // Nat Med. – 2015. – Vol. 21, No. 1. – P. 27–36. DOI: 10.1038/nm.3761
106. Finan B., Ma T., Ottaway N., Müller T.D., Habegger K.M., Heppner K.M., Kirchner H., Holland J., Hembree J., Raver C., Lockie S.H., Smiley D.L., Gelfanov V., Yang B., Hofmann S., Bruemmer D., Drucker D.J., Pfluger P.T., Perez-Tilve D., Gidda J., Vignati L., Zhang L., Hauptman J.B., Lau M., Brecheisen M., Uhles S., Riboulet W., Hainaut E., Sebokova E., Conde-Knape K., Konkar A., DiMarchi R.D., Tschöp M.H. Unimolecular dual incretins maximize metabolic benefits in rodents, monkeys, and humans // Sci Transl Med. – 2013. – Vol. 5, No. 209. – P. 209ra151. DOI: 10.1126/scitranslmed.3007218
107. Bech E.M., Voldum-Clausen K., Pedersen S.L., Fabricius K., Rudkjær L.C.B., Hansen H.H., Jelsing J. Adrenomedullin and glucagon-like peptide-1 have additive effects on food intake in mice // Biomed Pharmacother. – 2019. – Vol. 109. – P. 167–173. DOI: 10.1016/j.biopha.2018.10.040
108. Decara J., Rivera P., Arrabal S., Vargas A., Serrano A., Pavón F.J., Dieguez C., Nogueiras R., Rodríguez de Fonseca F., Suárez J. Cooperative role of the glucagon-like peptide-1 receptor and β3-adrenergic-mediated signalling on fat mass reduction through the downregulation of PKA/AKT/AMPK signalling in the adipose tissue and muscle of rats // Acta Physiol (Oxf). – 2018. – Vol. 222, No. 4. – P. e13008. DOI: 10.1111/apha.13008
109. Bojanowska E., Radziszewska E. Combined stimulation of glucagon-like peptide-1 receptor and inhibition of cannabinoid CB1 receptor act synergistically to reduce food intake and body weight in the rat // J Physiol Pharmacol. – 2011. – Vol. 62, No. 4. – P. 395–402.
110. Jouihan H., Will S., Guionaud S., Boland M.L., Oldham S., Ravn P., Celeste A., Trevaskis J.L. Superior reductions in hepatic steatosis and fibrosis with co-administration of a glucagon-like peptide-1 receptor agonist and obeticholic acid in mice // Mol Metab. – 2017. – Vol. 6, No. 11. – P. 1360–1370. DOI: 10.1016/j.molmet.2017.09.001
111. Elvert R., Bossart M., Herling A.W., Weiss T., Zhang B., Kannt A., Wagner M., Haack T., Evers A., Dudda A., Keil S., Lorenz M., Lorenz K., Riz M., Hennerici W., Larsen P.J. Team players or opponents: coadministration of selective glucagon and GLP-1 receptor agonists in obese diabetic monkeys // Endocrinology. – 2018. – Vol. 159, No. 8. – P. 3105–3119. DOI: 10.1210/en.2018-00399
112. Дружилов М. А., Кузнецова Т. Ю., Чумакова Г. А. Мульти-агонисты «инкретиновой оси» как перспективный инструмент управления кардиометаболическим риском при синдроме висцерального ожирения // Российский кардиологический журнал. – 2022. – Т. 27, № 4. – C. 4755. DOI: 10.15829/1560-4071-2022-4755
113. Simonsen L., Lau J., Kruse T., Guo T., McGuire J., Jeppesen J.F., Niss K., Sauerberg P., Raun K., Dornonville de la Cour C. Preclinical evaluation of a protracted GLP-1/glucagon receptor co-agonist: Translational difficulties and pitfalls // PLoS One. – 2022. – Vol. 17, No. 3. – P. e0264974. DOI: 10.1371/journal.pone.0264974
114. van Witteloostuijn S.B., Dalbøge L.S., Hansen G., Midtgaard S.R., Jensen G.V., Jensen K.J., Vrang N., Jelsing J., Pedersen S.L. GUB06-046, a novel secretin/glucagon-like peptide 1 co-agonist, decreases food intake, improves glycemic control, and preserves beta cell mass in diabetic mice // J Pept Sci. – 2017. – Vol. 23, No. 12. – P. 845–854. DOI: 10.1002/psc.3048
115. Stensen S., Gasbjerg L.S., Helsted M.M., Hartmann B., Christensen M.B., Knop F.K. GIP and the gut-bone axis – Physiological, pathophysiological and potential therapeutic implications // Peptides. – 2020. – Vol. 125. – P. 170197. DOI: 10.1016/j.peptides.2019.170197
116. Del Prato S., Kahn S.E., Pavo I., Weerakkody G.J., Yang Z., Doupis J., Aizenberg D., Wynne A.G., Riesmeyer J.S., Heine R.J., Wiese R.J.; SURPASS-4 Investigators. Tirzepatide versus insulin glargine in type 2 diabetes and increased cardiovascular risk (SURPASS-4): a randomised, open-label, parallel-group, multicentre, phase 3 trial // Lancet. – 2021. – Vol. 398, No. 10313. – P. 1811–1824. DOI: 10.1016/S0140-6736(21)02188-7
117. Jastreboff A.M., Kaplan L.M., Frías J.P., Wu Q., Du Y., Gurbuz S., Coskun T., Haupt A., Milicevic Z., Hartman M.L.; Retatrutide Phase 2 Obesity Trial Investigators. Triple-Hormone-Receptor Agonist Retatrutide for Obesity – A Phase 2 Trial // N Engl J Med. – 2023. – Vol. 389, No. 6. – P. 514-526. DOI: 10.1056/NEJMoa2301972
118. Fosgerau K., Jessen L., Lind Tolborg J., Østerlund T., Schæffer Larsen K., Rolsted K., Brorson M., Jelsing J., Skovlund Ryge Neerup T. The novel GLP-1-gastrin dual agonist, ZP3022, increases β-cell mass and prevents diabetes in db/db mice // Diabetes Obes Metab. – 2013. – Vol. 15, No. 1. – P. 62–71. DOI: 10.1111/j.1463-1326.2012.01676.x
119. Chodorge M., Celeste A.J., Grimsby J., Konkar A., Davidsson P., Fairman D., Jenkinson L., Naylor J., White N., Seaman J.C., Dickson K., Kemp B., Spooner J., Rossy E., Hornigold D.C., Trevaskis J.L., Bond N.J., London T.B., Buchanan A., Vaughan T., Rondinone C.M., Osbourn J.K. Engineering of a GLP-1 analogue peptide/anti-PCSK9 antibody fusion for type 2 diabetes treatment // Sci Rep. – 2018. – Vol. 8, No. 1. – P. 17545. DOI: 10.1038/s41598-018-35869-4
120. Jain M., Carlson G., Cook W., Morrow L., Petrone M., White N.E., Wang T., Naylor J., Ambery P., Lee C., Hirshberg B. Randomised, phase 1, dose-finding study of MEDI4166, a PCSK9 antibody and GLP-1 analogue fusion molecule, in overweight or obese patients with type 2 diabetes mellitus // Diabetologia. – 2019. – Vol. 62, No. 3. – P. 373–386. DOI: 10.1007/s00125-018-4789-6
Рецензия
Для цитирования:
Куркин Д.В., Бакулин Д.А., Морковин Е.И., Петров В.И., Стрыгин А.В., Корянова К.Н., Горбунова Ю.В., Колосов Ю.А., Иванова О.В., Павлова Е.В., Джавахян М.А., Заборовский А.В., Сапарова В.Б., Макаренко И.Е., Драй Р.И., Чумаченко А.Н. Физиология и фармакология рецептора глюкагоноподобного пептида-1. Фармация и фармакология. 2023;11(4):347-380. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2023-11-4-347-380
For citation:
Kurkin D.V., Bakulin D.A., Morkovin E.I., Petrov V.I., Strygin A.V., Koryanova K.N., Gorbunova Yu.V., Kolosov Yu.A., Ivanova O.V., Pavlova E.V., Dzhavakhyan M.A., Zaborovsky A.V., Saparova V.B., Makarenko I.E., Drai R.I., Chumachenko A.N. Physiology and pharmacology of glucagon-like peptide-1 receptor. Pharmacy & Pharmacology. 2023;11(4):347-380. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2023-11-4-347-380