Preview

Фармация и фармакология

Расширенный поиск

АНТИМИКРОБНАЯ АКТИВНОСТЬ ВОДНО-СПИРТОВЫХ ИЗВЛЕЧЕНИЙ ЛИСТЬЕВ И ПОЧЕК ДУБА ЧЕРЕШЧАТОГО (QUERCUS ROBUR L.)

https://doi.org/10.19163/2307-9266-2021-9-2-104-113

Полный текст:

Аннотация

Проблема поиска новых противомикробных препаратов на основе лекарственного растительного сырья в современной фармацевтической практике является по-прежнему актуальной. Интерес представляют растительные объекты, обладающие антимикробным действием благодаря содержанию в них комплекса биологически активных веществ. Дуб черешчатый – Quercus robur L. является перспективным растительным объектом, лекарственное растительное сырье которого может быть использовано при разработке новых антимикробных препаратов.

Цель. Проведение скрининга антимикробной активности водно-спиртовых извлечений листьев и почек дуба черешчатого.

Материалы и методы. Определение минимальной ингибирующей концентрации проводилось методом двойных серийных разведений в питательном бульоне Мюллера-Хинтона (Bio-Rad, США). В качестве тестовых культур были использованы штаммы микроорганизмов Американской коллекции типовых культур (АТСС): Staphylococcus aureus (АТСС 29213), Escherichia coli (АТСС 25922), Pseudomonas aeruginosa (АТСС 27853), а также Candida albicans (клинический штамм). Инкубацию проводили при температуре 35°С в течение 24 часов. Параллельно проводился опыт для постановки «отрицательного» контроля. Оценку результатов проводили визуально по наличию/отсутствию роста микроорганизмов в пробирках с соответствующими разведениями исследуемых образцов.

Результаты. В ходе проведенного исследования установлено, что водно-спиртовые извлечения листьев дуба черешчатого оказывают наибольший антимикробный эффект в отношении штаммов Staphylococcus aureus и Escherichia coli. Водно-спиртовые извлечения почек дуба черешчатого проявляют выраженную антимикробную активность в отношении штаммов Pseudomonas aeruginosa и Candida albicans.

Выявлено, что препарат настойка листьев дуба черешчатого в соотношении «сырье – экстрагент» (1:5) обладает выраженным антимикробным эффектом на штаммы Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, а при большей кратности разведения на штаммы Escherichia coli и Candida albicans. Препарат настойка почек дуба черешчатого в соотношении «сырье – экстрагент» (1:5) обладает выраженным антимикробным эффектом в отношении штаммов микроорганизмов Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli и Candida albicans при восьмикратном разведении. В отношении штаммов Pseudomonas aeruginosa антимикробная активность наблюдалась при 16 кратном разведении. Максимально выраженный антимикробный эффект был зафиксирован в отношении штамма Candida albicans при 32 кратном разведении.

В результате проведенного исследования можно сделать вывод о том, что для получения противомикробных препаратов – настойки листьев и почек дуба черешчатого, целесообразно использовать в качестве оптимального экстрагента спирт 70% в соотношении «сырье – экстрагент» (1:5). При данных параметрах экстракции отмечается наибольший антимикробный эффект в отношении изучаемых штаммов микроорганизмов. Также спирт 70% обладает лучшей проникающей способностью в глубокие слои эпидермиса по сравнению с более высокими концентрациями.

Заключение. Полученные результаты скринингового анализа антимикробной активности будут использованы в качестве обоснования для внедрения антимикробных препаратов на основе листьев и почек дуба черешчатого в медицинскую и фармацевтическую практику.

Об авторах

Н. А. Рябов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

аспирант кафедры фармакогнозии с ботаникой и основами фитотерапии



М. В. Рыжов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры фармакогнозии с ботаникой и основами фитотерапии



В. А. Куркин
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

доктор фармацевтических наук, профессор, заведующий кафедрой фармакогнозии с ботаникой и основами фитотерапии



С. Д. Колпакова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

доктор медицинских наук, профессор кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии



А. В. Жестков
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии



А. В. Лямин
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации 443099, Россия, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Россия

кандидат медицинских наук, доцент кафедры общей и клинической микробиологии, иммунологии и аллергологии



Список литературы

1. Dasgupta А., Krasowski M.D. Chapter 10 - Therapeutic drug monitoring of antimicrobial, antifungal and antiviral agents, Therapeutic Drug Monitoring Data (Fourth Edition), Academic Press. - 2020. – P.159-197. DOI: 10.1016/B978-0-12-815849-4.00010-4

2. Andrade H.B., Shinotsuka C.R., da Silva I.R.F., Donini C.S., Yeh Li H., de Carvalho F.B., Americano do Brasil P.E.A., Bozza F.A., Miguel Japiassu A. Highly active antiretroviral therapy for critically ill HIV patients: A systematic review and meta-analysis // PLoS One. – 2017. – Vol.12, No.10. - e0186968. DOI: 10.1371/journal.pone.0186968.

3. Grozdova N.B., Nekrasov V.I., Globa-Mikhailenko D.A. Trees, shrubs and vines. M .: Lesn. industry, 1986. - P. 176-178.

4. Maevsky P.F. Flora of the middle zone of the European part of Russia. 11th ed. M .: Partnership of scientific publications KMK, 2014. p. 200-201.

5. British Pharmacopoeia 2009. British Pharmacopoeia Herbal Drugs and Herbal Drug Preparations. Oak Bark. 2009; Vol. III. 7203 p.

6. European Pharmacopoeia - 8th Edition. «01/2008:1887 corrected 6.0». 2013. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://pharmeuropa.edqm.eu (Дата обращения 12 апреля 2021).

7. Государственная фармакопея Российской Федерации / МЗ РФ. XIV изд. Т. I-IV. М., 2018. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http:// http://femb.ru/femb/pharmacopea.php (Дата обращения 16 апреля .2021).

8. Fatehi S., Mohammadi Sichani M., Tavakoli M. Evaluation of antimicrobial and Anti-quorum sensing activity of mazouj and ghalghaf galls extracts of oak against Pseudomonas aeruginosa // Qom Univ Med Sci J. – 2018. – Vol.12, No.10. – P.36-45. DOI:10.29252/qums.12.10.36

9. Pailhoriès H., Munir M.T., Aviat F., Federighi M., Belloncle C., Eveillard M. Oak in Hospitals, the Worst Enemy of Staphylococcus aureus? // Infection Control & Hospital Epidemiology. – 2017. – Vol.38, No.3. – P.382–384. DOI:10.1017/ice.2016.304

10. Smailagić A., Ristivojević P., Dimkić I., Pavlović T., Dabić Zagorac D., Veljović S., Fotirić Akšić M., Meland M., Natić M. Radical Scavenging and Antimicrobial Properties of Polyphenol Rich Waste Wood Extracts // Foods. – 2020. – Vol.9, No.3. – P.319. DOI: 10.3390/foods9030319.

11. Sarwar R, Farooq U, Naz S, Riaz N, Majid Bukhari S, Rauf A, Mabkhot Ya.N., Al-Showiman S.S. Isolation and Characterization of Two New Antimicrobial Acids from Quercus incana (Bluejack Oak) // Biomed Res Int. – 2018. – Vol.2018. - 3798105. DOI:10.1155/2018/3798105

12. Smailagić A., Zagorac D.D., Veljović S., Sredojević M., Relić D., Fotirić M. A., Roglić G., Natić M. Release of wood extractable elements in experimental spirit model: Health risk assessment of the wood species generated in Balkan cooperage // Food Chemistry. – 2021. – Vol. 338. – 127804. DOI:10.1016/j.foodchem.2020.127804.

13. Elansary O. H., Szopa A., Kubica P., Ekiert H., Mattar A. M., Al-Yafrasi M.A., El-Ansary D.O., Zin El-Abedin T.K., Yessoufou K. Polyphenol Profile and Pharmaceutical Potential of Quercus spp // Bark Extracts. Plants. – 2019. – Vol.8, No.11. - 486. DOI:10.3390/plants8110486

14. Rao N. In vitro phytochemical screening, antioxidant & antimicrobial activity of the methanolic extract of Quercus infectoria L. – 2013. – Vol.5. – P.273-277.

15. Dróżdż P., Pyrzyńska K. Assessment of polyphenol content and antioxidant activity of oak bark extracts // European Journal of Wood and Wood Products. – 2017. – Vol.76. – P.793-795. DOI:10.1007/s00107-017-1280-x.

16. Sánchez-Burgosa J.A., Ramírez-Maresb M.V., Larrosac M.M., Gallegos-Infantea J.A., González-Laredoa R.F., Medina-Torresd L., Rocha-Guzmána N.E. Antioxidant, antimicrobial, antitopoisomerase and gastroprotective effect of herbal infusions from four Quercus species. Industrial Crops and Products. – 2013. – Vol.42. – P.57-62. DOI:10.1016/j.indcrop.2012.05.017

17. Буданцев, А.Л. Растительные ресурсы России. Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Том 2: Actinidiaceae-Malvaceae, Euphorbiaceae-Haloragaceae. / А.Л. Буданцев. - М.: Товарищество научных изданий КМК, 2009. - 774 c.

18. Grotewold E. The Science of Flavonoids. 8th ed. New York: Springer. 2006. 274 p. DOI:10.1007/978-0-387-28822-2.

19. Bedi M.K., Shenefelt P.D. Herbal Therapy in Dermatology // Archives of Dermatology. – 2002. – Vol.138, No.2. – P.237-238. DOI:10.1001/archderm.138.2.232.

20. Cushnie T.P., Lamb A.J. Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids // Int. J. Antimimicrob. Agents. – 2011. – Vol.38. – P.99–107. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2011.02.014.

21. Scalbert A., Haslam E. Polyphenols and chemical defence of the leaves of Quercus robur // Phytochemistry. – 1987. – Vol.26. – P.3191-3195. DOI:10.1016/S0031-9422(00)82468-1.

22. Benyagoub E., Nabbou N., Dine A. Antimicrobial Effect of Quercus robur L. Leaves Selective Extracts from the Mezi Mountain of Djenane Bourezg (West of Algeria) // Current Bioactive Compounds. – 2020. – Vol.16, No.8. – P.1181-1190. DOI:10.2174/1573407216666191226141609.

23. Benyagoub E., Nabbou N., Boukhalkhel S., Dehini I. The In vitro Evaluation of the Antimicrobial Activity of Quercus robur L. Methanolic and Aqueous Leaves’ Extracts, from the Algerian High Plateaus Against some Uropathogenic Microbial Strains // Phytopathology. – 2019. – Vol.12. DOI: 10.29252/qums.12.10.36.

24. Sánchez-Burgosa J.A., Ramírez-Maresb M.V., Larrosac M.M., Gallegos-Infantea J.A., González-Laredoa R.F., Medina-Torresd L., Rocha-Guzmána N.E. Antioxidant, antimicrobial, antitopoisomerase and gastroprotective effect of herbal infusions from four Quercus species. Industrial Crops and Products. – 2013. – Vol.42. – P.57-62. DOI:10.1016/j.indcrop.2012.05.017

25. Nassima B, Behidj-Benyounes N, Ksouri R. Antimicrobial and antibiofilm activities of phenolic compounds extracted from Populus nigra and Populus alba buds (Algeria) // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. – 2019. – Vol. 55. - e18114. DOI:10.1590/s2175-97902019000218114

26. Isidorov V.A., Bagan R., Szczepaniak L., Swiecicka I. Chemical profile and antimicrobial activity of extractable compounds of Betula litwinowii (Betulaceae) buds // Open Chemistry. – 2015. – Vol.13, No.1. – P.123-127. DOI: 10.1515/chem-2015-0019

27. The definition of the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. Guidelines. MUK 4.2.1890-04. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. – 2004. – Vol.6, No.4. – P.306-359.

28. Козлова И. В., Лекарева Л. И., Быкова А. П. Кандидоз желудочно-кишечного тракта // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. - 2016. – Т.3. - С. 40-46.

29. Golus J., Sawicki R., Widelski J., Ginalska G. The agar microdilution method – a new method for antimicrobial susceptibility testing for essential oils and plant extracts // J Appl Microbiol. – 2016. – Vol.121. – P.1291-1299. DOI: 10.1111/jam.13253


Для цитирования:


Рябов Н.А., Рыжов М.В., Куркин В.А., Колпакова С.Д., Жестков А.В., Лямин А.В. АНТИМИКРОБНАЯ АКТИВНОСТЬ ВОДНО-СПИРТОВЫХ ИЗВЛЕЧЕНИЙ ЛИСТЬЕВ И ПОЧЕК ДУБА ЧЕРЕШЧАТОГО (QUERCUS ROBUR L.). Фармация и фармакология. 2021;9(2):104-113. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2021-9-2-104-113

For citation:


Ryabov N.A., Ryzhov V.M., Kurkin V.A., Kolpakova S.D., Zhestkov A.V., Lyamin A.V. ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF WATER-ETHANOLIC EXTRACTIONS FROM QUERCUS ROBUR L. LEAVES AND BUDS. Pharmacy & Pharmacology. 2021;9(2):104-113. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2021-9-2-104-113

Просмотров: 200


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2307-9266 (Print)
ISSN 2413-2241 (Online)